Com a disseminação global do vírus da peste suína africana (vPSA) e a evidência de que rações e/ou ingredientes podem ser vetores potenciais para transmissão de patógenos, é fundamental entender o papel que os fabricantes de rações podem desempenhar em relação à potencial disseminação desse vírus altamente virulento.
Uma fábrica de ração em escala piloto equipada com um misturador, elevador de caçamba e dispensador correspondente foi construída no laboratório animal Biosafety Level-3 Ag no Instituto de Pesquisa de Biossegurança da Universidade Estadual do Kansas. Foram coletadas amostras de um total de 18 locais diferentes do equipamento e laboratório para análise da contaminação ambiental antes e após a introdução de ração inoculada com vPSA. Primeiro, um lote de ração foi fabricado na fábrica piloto para confirmar que era negativo para vPSA; então, uma ração inoculada com vPSA foi adicionada ao misturador e um lote de ração foi feito com outros ingredientes não infectados. Os ingredientes foram misturados e descarregados através do elevador de caçambas. Subsequentemente, foram fabricados mais quatro lotes de ração isenta de vPSA. Os swabs ambientais foram coletados após a descarga de cada lote de ração com locais categorizados em quatro zonas: A) superfície de contato com alimentação, B) superfície de contato sem alimentação, mas <3,2 pés de distância da alimentação, C) superfície de contato sem alimentação > 3,2 pés de distância da alimentação e D) superfícies de transição, como sapatos de trabalho. Swabs ambientais foram analisados por qPCR para o gene PSAV P72 no laboratório BSL-3 para detectar DNA específico do vPSA.
Swabs ambientais coletados antes da introdução da ração inoculada com vPSA foram negativos para DNA de vPSA. Swabs ambientais coletados após a produção de ração inoculada com vPSA resultaram na contaminação das zonas A-D. Os níveis de contaminação de vPSA-DNA são relatados como valor Ct ou número de cópias genômicas (CN) por ml. Neste caso, não houve evidência de interação área de amostragem × lote e nenhuma diferença na proporção de reações positivas para vPSA entre o local de amostragem ou lote de ração ao longo do experimento. Isso indica que, uma vez que as instalações foram contaminadas com PSA, a contaminação se espalhou rapidamente e persistiu nas superfícies ambientais, mesmo durante a fabricação de lotes subsequentes de ração não inoculada com PSA. As amostras de superfície transiente (Zona D) apresentaram vPSA mais detectável (valor Ct mais baixo) em comparação com as outras superfícies, indicando um alto nível de contaminação vPSA (valores elevados de CN). Amostras coletadas após a fabricação 3 tiveram vPSA menos detectável (um valor Ct mais alto) em comparação com amostras coletadas imediatamente após a fabricação do lote de ração inoculado com vPSA, indicando níveis mais baixos de contaminação por vPSA (baixos valores de CN) nas repetições subsequentes de o processo de fabricação de ração.
Houve evidência de interação área de amostragem x lote para número de cópias genômicas/ml. Para amostras coletadas após a fabricação do lote de ração inoculado com ASFV, foi observado menor número de cópias genômicas de vPSA/mL (maior Ct) para swabs coletados de superfícies sem contato com alimentação > 3,2 pés de distância (Zona C) em comparação com superfícies de contato com alimentação (Zona A), com outras superfícies (Zona B e D) sem evidência de diferença significativa. Após a fabricação das execuções 1, 2 e 3, as amostras coletadas de superfícies transitórias (zona D) apresentaram maior número de cópias genômicas vPSA/ml (baixo Ct) em comparação com outros locais de amostragem. Após a execução de fabricação 4, não houve evidência de diferença no número de cópias genômicas de vPSA/ml entre os locais de amostragem.
Em conclusão, uma vez que o vPSA foi introduzido experimentalmente em um ambiente de fabricação de ração, o vírus foi amplamente distribuído por toda a instalação com apenas pequenas alterações na frequência de detecção à medida que os lotes subsequentes de ração eram produzidos.
Elijah CG, Trujillo JD, Jones CK, Gaudreault NN, Stark CR, Cool KR, Paulk CB, Kwon T, Woodworth JC, Morozov I, Gebhardt JT, Richt JA. Evaluating the Distribution of African Swine Fever Virus Within a Feed Mill Environment Following Manufacture of Inoculated Feed. Kansas Agricultural Experiment Station Research Reports. 2020; 6(10). https://doi.org/10.4148/2378-5977.8012